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細胞貼壁是細胞（除腫瘤細胞外）在體外培養條件下，完成貼壁后均為單層生長(cháng)，原因是貼壁細胞有接觸性抑制的特點(diǎn)。一般認為接觸抑制是細胞間的一種識別作用，對于動(dòng)物細胞的形態(tài)形成與穩定具有重要性的作用。由于貼壁細胞的一面是緊貼在培養瓶上的，如果其上方存在細胞與其相粘附，那么下方的細胞很快就會(huì )缺乏營(yíng)養餓死。
不貼壁的一些原因：
1. 胰酶消化時(shí)間把控不當：消化不夠細胞本身就是成團的；若胰酶處理太久，容易造成細胞膜蛋白損傷，使細胞貼壁不緊，顯微鏡下觀(guān)察立體感不強，嚴重的時(shí)候甚至會(huì )造成細胞死亡。
2. 缺少貼壁因子：血清中含有促貼壁因子，而無(wú)血清培養基工藝中由于缺少這種促貼壁因子，細胞的貼壁效果會(huì )下降很多。
3. 支原體或細菌的污染。
4. 培養液配制、儲存不當，如pH值過(guò)堿，Gln量太少等原因。
5. 復蘇的細胞本身狀態(tài)不好，已經(jīng)老化，失去貼附性。
6. 接種細胞數目太少，無(wú)法分泌足夠的細胞外基質(zhì)。
7. 復蘇時(shí)處理速度太慢，復蘇過(guò)程不當。
如何促進(jìn)細胞貼壁：
1. 適度消化細胞：HepG-2、A549、Hela、SGC-7901幾種癌細胞處理時(shí)間可適當放長(cháng)，一般處理5-6min，C2C12、COS-7、NIH-3T3比較容易脫落，2min足矣，P19Cl6和293細胞貼壁不緊，可在PBS漂洗后，直接換新鮮培養基打散。
2. 最好用塑料瓶培養，如果是玻璃瓶,那么可以用鼠尾膠原包被一下培養瓶，或者用鹽酸對培養瓶進(jìn)行蝕刻，或者涂Laminin/fibronectin/collagen/BSA，也可以幫助細胞貼附新的培養瓶，細胞不易貼壁，建議加多聚賴(lài)氨酸處理。
3. 正確配制消化液或培養液。
4. 使用合適的細胞外基質(zhì)或貼壁試劑。
5. 復蘇新的細胞，第一周用20%血清幫助細胞復原。
6. 傳代接種一定要鋪的均勻，避免細胞抱團生長(cháng)。
7. 細胞傳代24小時(shí)之內，最好不要晃動(dòng)，以免影響貼壁。
8. 體內上皮細胞生長(cháng)在膠原構成的基膜上，因此培養在有膠原的底物上有利于生長(cháng)。人或小鼠表皮細胞培養，可以用γ射線(xiàn)照射后的3T3細胞為飼養層，另外降低pH、Ca2+含量和溫度，均有利于上皮細胞生長(cháng)。
