商品屬性：

該制品為全體系凍干微球制品，內含恒溫擴增所用的反應緩沖液、SYBR Green 熒光染料、Mg2+、dNTP、Bst 4.0 DNA/RNA 聚合酶等，使用時(shí)只需要加入引物、模板即可進(jìn)行核酸恒溫擴增。Bst 4.0 DNA/RNA 聚合酶具有依賴(lài)于 RNA 模板的聚合酶活性（逆轉錄），還具有依賴(lài)于 DNA 的聚合酶活性，因此無(wú)論 DNA 或 RNA 樣本均可使用該制品進(jìn)行恒溫擴增。該制品是進(jìn)行 LAMP 及RT-LAMP 擴增反應的試劑。
SYBR Green 系列產(chǎn)品為實(shí)時(shí)熒光檢測的專(zhuān)用試劑，可直接在恒溫熒光儀或定量 PCR 以上進(jìn)行 LAMP 反應擴增。
儲存：-20℃保存 2 年；室溫（25℃）保存>6 個(gè)月。
使用凍干微球進(jìn)行全擴增體系用品的制備方法：將優(yōu)化的擴增引物分裝于 0.2 ml EP 管底部，于 70-80℃條件烘干1-2h。烘干后的 0.2 ml EP 管已經(jīng)含有干燥的擴增引物，再加入一粒凍干微球即可制備成全擴增體系干燥品，該干燥品無(wú)需冷鏈運輸，可長(cháng)期保存。
反應體系說(shuō)明：每一個(gè)凍干微球為按照 25 μl 反應體系建立，在使用時(shí)只需要加入 25 μl 的 ddH2O 或模板即可進(jìn)行反應。
使用實(shí)例，進(jìn)行 LAMP 熒光擴增
1. 配制熒光 LAMP 反應體系在 0.2 ml EP 反應管中加入下述試劑
Bst 4.0 SG Bead 1 粒
10xLAMP Primer Mix 2.5 μl
模板 DNA/RNA X μl
ddH2O 到液體總量 25 μl
10xLAMP Primer Mix 濃度：FIP/BIP 分別為 16 μM、LoopF/B 分別為 4-8 μM、F3/B3 分別為 2 μM。
2. 反應體系配好后，置于熒光定量 PCR 儀中于 65°C進(jìn)行反應 15~30min。1min 收集一次熒光信號。讀取擴增曲線(xiàn)進(jìn)行陰性和陽(yáng)性判讀。
3. 根據熒光擴增曲線(xiàn)判讀陽(yáng)性和陰性。
注意事項：
（1）關(guān)于礦物油的使用，在配制完 LAMP 反應體系后，可加入一滴礦物油覆蓋于反應液上部，可以有效的減少氣溶膠的污染。實(shí)驗證明礦物油并不影響機器的熒光數值讀取。
（2）關(guān)于擴增曲線(xiàn)的異常：由于 LAMP 擴增速度較快，熒光信號讀取可能存在矯正計算問(wèn)題，這與熒光設備的軟件算法有管。在有些熒光 PCR 儀上，在相對熒光模式下，表現出曲線(xiàn)飛峰、終點(diǎn)曲線(xiàn)下降的問(wèn)題。此時(shí)調整到原始熒光值模式下觀(guān)察結果，或致電相應設備供應商進(jìn)行咨詢(xún)。

PCR基本步驟及注意事項？

一、實(shí)驗原理

PCR是體外人工選擇性擴增DNA的一種方法，它類(lèi)似于生物體內DNA的復制。在生物體內DNA復制需要模板、引物、DNA聚合酶、DNA解旋酶、 dNTPs；而體外PCR反應同樣需要類(lèi)似的成分，有模板、引物、PCR Buffer、Taq酶、dNTPs。其中引物是人工設計的特定序列，實(shí)現對特定位置的擴增；PCR Buffer提供一個(gè)反應的緩沖環(huán)境；反應過(guò)程同生物體內一樣，DNA雙鏈打開(kāi)，引物結合模板，延伸形成新鏈。而這些過(guò)程在生物體內靠DNA解旋酶解鏈，而在體外在通過(guò)控制反應溫度實(shí)現的。如常用94℃變性模板DNA打開(kāi)雙鏈，在退火溫度處引物結合到模板上，最后在72℃完成延伸，并反復重復此過(guò)程即可實(shí)現對特定片段DNA的大量擴增。到第三循環(huán)開(kāi)始才產(chǎn)生出和靶DNA區段相同的DNA分子，進(jìn)一步循環(huán)地產(chǎn)生出靶DNA區段的指數加倍。

在擴增后期,由于產(chǎn)物積累,使原來(lái)呈指數擴增的反應變成平坦的曲線(xiàn),產(chǎn)物不再隨循環(huán)數而明顯上升,這稱(chēng)為平臺效應。平臺期(Plateau)會(huì )使原先由于錯配而產(chǎn)生的低濃度非特異性產(chǎn)物繼續大量擴增，達到較高水平。因此，應適當調節循環(huán)次數，在平臺期前結束反應， 減少非特異性產(chǎn)物。到達平臺期(Plateau)所需循環(huán)次數取決于樣品中模板的拷貝。

二、主要的成分

1.模板可以是多種形式，主要包括基因組DNA、質(zhì)粒DNA、攜帶病毒的基因組DNA、PCR產(chǎn)物，cDNA等，但不能為RNA。對于不同類(lèi)型的模板，其主要不同在于預變性的時(shí)間以及模板的量。一般對于大的基因組DNA預變性時(shí)間10min足夠，質(zhì)粒DNA2min、攜帶病毒的基因組DNA預變性2min、PCR產(chǎn)物預變性2min即可。

注意cDNA為單鏈DNA，但仍可做PCR的模板，只不過(guò)在第一輪循環(huán)時(shí)只有一個(gè)引物結合，合成另一條鏈。從第二輪開(kāi)始，兩個(gè)引物均與特異位點(diǎn)結合，從而實(shí)現了與常規PCR的接軌。而同作為單鏈的RNA卻不能進(jìn)行PCR擴增，原因就在于實(shí)現PCR反應的是DNA聚合酶，只能特意識別DNA鏈。

2.對于模版的量來(lái)說(shuō)，一般25ul體系DNA的質(zhì)量為50—100ng。對于基因組DNA由于其結構比較復雜，提取的濃度也往往比較大，為防止濃度過(guò)大對PCR造成影響，故需對提取的DNA進(jìn)行梯度稀釋。否則濃度過(guò)高則可能會(huì )引起非特異性擴增。對于質(zhì)粒及PCR產(chǎn)物由于其結構簡(jiǎn)單，且提取濃度一般較低，則無(wú)需稀釋。

PCR實(shí)驗中應該注意的問(wèn)題有哪些?

沒(méi)有ct值

檢測結果遇到?jīng)]有Ct值情況,排查是否有以下問(wèn)題:

1、循環(huán)數不夠(一般不超過(guò)45循環(huán),不僅背景值提高,定量也不準);

2、PCR程序設置錯誤,檢測熒光信號的步驟有誤。一般SG法采用72℃延伸時(shí)采集,TaqMan法則一般在退火結束時(shí)或延伸時(shí)采集信號,另外熒光采集是否選中;

3、引物或探針降解?？赏ㄟ^(guò)PAGE電泳檢測引物和探針是否降解;

4、模板量可能降解或上樣量不足(不超過(guò)500ng,根據試劑盒說(shuō)明書(shū)即可), 對未知濃度的樣本應從系列稀釋樣本的最高濃度做起;如果發(fā)生模板降解,應考慮樣本準備中雜質(zhì)的引入及反復凍融的情況,建議將模板樣本小量分裝儲備,避免反復凍融;

5、引物探針是否合適(尤其是引物跨越內含子,以確保擴增基因組DNA;上下游引物Tm值超過(guò)4℃以上也會(huì )影響擴增)。

ct值過(guò)晚

在相對定量中, Ct值一般控制在15—25之間比較好,如果在絕對定量中, 對低拷貝數的樣品,Ct值會(huì )增大, 但是一般不宜超過(guò)40循環(huán), 否則定量不準確。

因此,判斷Ct值出現過(guò)晚是否屬于非正常情況, 需要根據具體實(shí)驗設計和目的進(jìn)行。

1、擴增效率低。引物之間或者引物和探針的比例不合適, 需要進(jìn)行優(yōu)化;引物或探針設計不合理, 需要重新設計;

2、PCR程序不合適, 改用三步法進(jìn)行反應, 或者優(yōu)化退火/延伸溫度, 可以適當降低退火溫度; 退火/延伸時(shí)間短(可以在推薦的時(shí)間條件下延長(cháng)10s);

3、MgCl2濃度不合適,增加鎂離子濃度等。PCR各種反應成分的降解或加樣量的不足;

4、PCR產(chǎn)物太長(cháng)。PCR產(chǎn)物設計超過(guò)500bp;

5、模板中存在抑制物。用高純度模板進(jìn)行PCR檢測或將模板進(jìn)行稀釋。

公司正在出售的產(chǎn)品：